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全外显子测序(Whole Exome Sequencing, WES)是一种广泛应用于基因组学研究的技术,主要用于检测编码区域的变异。然而,除了单核苷酸变异(SNVs)和小插入/缺失(indels)之外,拷贝数变异(Copy Number Variations, CNVs)也是影响基因功能的重要因素。CNVs是指基因组中某些区域的拷贝数增加或减少,可能导致基因剂量效应,从而影响表型。
Conifer(Copy Number Inference From Exome Reads)是一种专门用于从WES数据中检测CNV的工具。本文将详细介绍如何使用Conifer进行WES数据的CNV分析。
首先,确保你的系统上已经安装了以下软件:
Conifer可以通过以下命令从GitHub上克隆并安装:
git clone https://github.com/abyzovlab/Conifer.git
cd Conifer
python setup.py install
你需要准备以下数据:
Conifer使用RPKM(Reads Per Kilobase per Million mapped reads)值来标准化测序深度。首先,你需要为每个样本生成RPKM文件。
conifer rpkm --probes probes.txt --input sample.bam --output sample.rpkm.txt
其中,probes.txt
是目标区域的BED文件,sample.bam
是测序数据的BAM文件,sample.rpkm.txt
是输出的RPKM文件。
如果你有多个样本,需要将它们的RPKM文件合并成一个矩阵。
conifer merge --input sample1.rpkm.txt sample2.rpkm.txt --output all_samples.rpkm.txt
使用合并后的RPKM文件运行Conifer进行CNV检测。
conifer analyze --probes probes.txt --rpkm all_samples.rpkm.txt --output analysis_results.hdf5
从分析结果中生成CNV调用。
conifer call --input analysis_results.hdf5 --output cnv_calls.txt
cnv_calls.txt
文件包含了检测到的CNV区域及其拷贝数状态。每一行代表一个CNV事件,包含以下信息:
你可以使用R或其他可视化工具对CNV结果进行可视化。Conifer提供了一个R脚本来生成CNV图谱。
library(Conifer)
cnv_data <- read.table("cnv_calls.txt", header=TRUE)
plotCNV(cnv_data)
你可以根据CNV的大小、拷贝数状态等条件对CNV调用进行过滤。
conifer filter --input cnv_calls.txt --output filtered_cnv_calls.txt --min_size 1000 --max_size 1000000
Conifer还支持比较多个样本之间的CNV差异。
conifer compare --input cnv_calls.txt --output comparison_results.txt
如果RPKM值波动较大,可能是由于测序深度不均匀或目标区域覆盖不均。建议检查BAM文件的质量,并确保目标区域文件准确。
Conifer依赖于Python 2.7,如果你的系统上安装了Python 3.x,可能需要使用虚拟环境来运行Conifer。
virtualenv -p /usr/bin/python2.7 conifer_env
source conifer_env/bin/activate
Conifer是一个强大的工具,能够从WES数据中检测CNV。通过本文的介绍,你应该能够使用Conifer进行WES数据的CNV分析,并对结果进行解读和可视化。希望本文对你有所帮助,祝你在基因组学研究中取得丰硕的成果!
注意:本文假设读者已经具备基本的生物信息学知识和命令行操作技能。如果你在操作过程中遇到问题,建议参考相关软件的官方文档或寻求专业人士的帮助。
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